1. Einführung – Warum ein Monotub mit sterilem Substrat?
Monotubs sind die bevorzugte Wahl für Hobby-Mikolog*innen und erfahrene Kultivatoren, weil sie sich durch ein minimales Risiko von Kontaminationen, eine einfache Handhabung und ein hohes Ertragspotenzial auszeichnen.
Die Grundlage jedes erfolgreichen Monotub‑Aufbaus ist ein korrekt sterilisiertes Substrat und eine präzise Inkubationskontrolle. Diese beiden Faktoren entscheiden darüber, ob die Pilzkultur gedeiht oder im Stich bleibt.
Tipp: Bevor Sie starten, lesen Sie sich die Hygienebedingungen gründlich durch. Jeder Schritt muss sauber und steril ausgeführt werden, um die Wahrscheinlichkeit von schädlichen Mikroorganismen zu minimieren.
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2. Schritt‑für‑Schritt‑Anleitung – Von der Mischung bis zur Ernte
2.1. Vorbereitung der Materialien
| Gegenstand | Zweck | Hygienetipp |
|---|---|---|
| 5‑L‑Monotub (BPA‑frei) | Hauptkulturbehälter | Vor Gebrauch gründlich desinfizieren |
| 300 ml Wasser | Hydratisierung | Sterilisiertes, kochendes Wasser |
| Substrat‑Rezept (z. B. 3:1:1 Mix) | Nährstoffbasis | 1‑Höhe‑Tisch, Handschuhe tragen |
| Sterilisiertes Rasen- oder Stroh | Zusatznutrient | In 1 h kochen, abkühlen |
| 25 g Zement | pH‑Regulierung | Mischen vor dem Aufgießen |
| 0,5 g Calciumhydroxid (Ca(OH)₂) | Nährstoff & pH | Vor dem Einfüllen mischen |
| 10 g Agar | Filter | Für die Topfeuchte, optional |
| 10 ml Sterile Tris‑Buffer (pH 7,5) | Hydratation | Nur für die letzte Mühlung |
| 1 L Steriles Wasser (für das Inoculum) | Inokulation | Sterilisiert und abgekühlt |
| 0,5 g Magnesiumsulfat | Nährstoff | Vor dem Einfüllen mischen |
Hygiene‑Regel: Alle Werkzeuge (Messer, Schaufeln, Becher) müssen vor dem Gebrauch autoklaviert oder mit 70 % Isopropylalkohol (IPA) desinfiziert werden.
2.2. Sterilisation des Substrats
- Mischen
- 3 Teile braunes Reiskorn, 1 Teil Haferkorn, 1 Teil Brauner Reiskorn‑/Haferkorn‑Mischung.
- 0,5 g Ca(OH)₂ und 25 g Zement hinzufügen.
- Alles gründlich vermischen, bis keine Klumpen mehr entstehen.
- Hydratation
- 300 ml kochendes Wasser zugeben, gut mischen.
- 30 min stehen lassen, bis das Substrat die richtige Konsistenz (zähflüssig) erreicht hat.
- Sterilisation
- Substrat in einen 1‑Liter‑Beutel füllen, luftdicht verschließen.
- Im Autoklav 121 °C, 15 min, Druck 15 psi.
- Nach dem Abkühlen 1 h bei Raumtemperatur abkühlen lassen.
2.3. Einfüllen in das Monotub
- Tiefenbestimmung
- Das Monotub mit einer Schablone aus Pappe markieren: 1‑L‑Tiefe für das Substrat, 0,5 L für das Inoculum.
- Einfüllen
- Das sterilisierte Substrat in das Monotub geben, leicht klopfen, um Luftblasen zu entfernen.
- 0,5 L Zement‑Wasser‑Mischung (10 ml Tris‑Buffer für pH‑Kontrolle) auf das Substrat gießen, gleichmäßig verteilen.
- Inokulation
- Das Inoculum (Sporen‑ oder Mycel‑Bruchstücke) gleichmäßig auf dem Substrat verteilen.
- Das Monotub mit einer luftdichten Folie abdecken, um Luftstrom zu minimieren.
- Luftaustausch
- Anschließend das Monotub mit einer 0,2 mm‑Filterfolie abdecken, um einen kontrollierten Luftaustausch zu ermöglichen.
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